SulfoLink Coupling Resin是一類預活化樹脂，可以通過與巰基或者氨基的反應實現抗原的固定化，進而對免疫血清中的抗體進行純化。

產品性能：

純化流程

SulfoLink Coupling Resin 針對巰基和氨基的偶聯條件有所差異，對于含有巰基抗原偶聯請參考1.1 流程，對于含有氨基抗原偶聯請參考1.2 流程。

1.1含巰基抗原的偶聯流程

1.1.1緩沖液準備

所用水和Buffer 在使用之前建議用0.22 μm 或0.45 μm 濾膜過濾。

偶聯液：50 mMTris，5 mMEDTA-Na，pH 8.5

封閉液：50 mMTris，5 mMEDTA-Na，50 mML-半胱氨酸，pH 8.5

保護液：20 mM 磷酸鹽緩沖液，20% 乙醇，pH 8.0

結合/洗雜液： 20 mM 磷酸鹽緩沖液，pH 8.0

洗脫液：100 mM 甘氨酸，pH 2.5-3.0

中和液：1 M Tris-HCl， pH 8.5

1.1.2抗原準備

抗原樣品使用前務必確保其巰基處于還原狀態（可以使用Ellman’s Reagent 檢測自由巰基的含量）。如果巰基已經氧化，必須對抗原進行還原，一般推薦使用還原劑TCEP（Tris(2-carboxyethyl) phosphine），TCEP 溶液很穩定，可以選擇性的、高效的打開抗原中的二硫鍵，并且不影響抗原與樹脂的偶聯反應，每毫克抗原中TCEP 的添加量不超過12mg，需要自己進行優化。如果使用DTT 等含有巰基的還原劑，處理完樣品必須要將還原劑去除，否則會影響抗原與樹脂的偶聯效率。使用偶聯液溶解抗原，制備成終濃度為1-3 mg/ml 的抗原溶液。建議該溶液現用現配，儲存時間過長會影響偶聯效果。

1.1.3抗原偶聯

1) 取適量的SulfoLink Coupling Resin，加入合適的重力柱中，靠重力流干保護液，用3倍柱體積的偶聯液平衡樹脂，待偶聯液流干，再加入3 倍柱體積的偶聯液，重復操作2遍。共使用9 倍柱體積的偶聯液。

2) 關閉柱子的下端出口，加入等體積的含巰基的抗原，混勻，取出至于合適的離心管中，置于28℃震蕩孵育30min。

注：確保樹脂充分懸浮起來，否則將大大影響偶聯效率。

3) 將上述反應體系取出，轉移至重力柱中，流干其中溶液，并收集流出，再用3 倍柱體積的偶聯液清洗樹脂，合并兩次流出。

注：如有需要，可以使用Ellman’s Reagent 檢測其中巰基含量，得出抗原殘留量，從而計算偶聯效率。

4) 關閉柱子的下端出口，加入等體積的封閉液，混勻，轉移至合適的離心管中，置于28℃震蕩孵育30min。

5) 將上述反應體系取出，轉移至重力柱中，流干其中的封閉液。

注：如果立即使用，可以參考1.1.4 操作。如果以后使用，可以用3 倍柱體積的結合液清洗樹脂，然后保存在等體積的保護液中，于2℃-8℃保存。

1.1.4抗體純化

1) 將偶聯了抗原的樹脂裝入合適的層析柱，用5 倍柱體積的結合液進行平衡，使填料處于與抗體更易結合環境中，一方面保護目標抗體，另一方面提高抗體結合效率。

2) 將含有抗體的樣品加到平衡好樹脂中，為了保證抗體與樹脂充分接觸，提高目標抗體的回收率，可以控制上樣流速在0.5-1 ml/min，并收集流出液。

3) 用10-15 倍柱體積的洗雜液進行清洗，去除非特異性吸附的雜蛋白，提高目的抗體的純度，收集洗雜液。

4) 使用5-10 倍柱體積的洗脫液，收集洗脫組分，即目的抗體。

注：為了保持抗體活性，需要立即將洗脫組分透析至pH 7.0-8.0 的緩沖液中，或者先加入1/10倍洗脫組分體積的中和液，將洗脫組分進行中和，再透析。

5) 依次使用3 倍柱體積的結合液和5 倍柱體積的去離子水平衡樹脂，最后再用5 倍柱體積的保護液平衡，然后保存在等體積的保護液中，置于2℃-8℃保存，防止填料被細菌污染。

1.2含氨基抗原偶聯流程

1.2.1緩沖液準備

所用水和Buffer 在使用之前建議用0.22 μm 或0.45 μm 濾膜過濾。

偶聯液：0.1MNaHCO3，0.5MNaCl，pH 8.5

封閉液：50 mMTris， 5 mMEDTA-Na， 50 mML-半胱氨酸，pH 8.5

保護液：20 mM 磷酸鹽緩沖液，20% 乙醇，pH 8.0

結合/洗雜液: 20 mM 磷酸鹽緩沖液，pH 8.0

洗脫液: 100 mM 甘氨酸，pH 2.5-3.0

中和液：1 M Tris-HCl， pH 8.5

1.2.2抗原準備

氨基是一種比較穩定的基團，所以，對于含有氨基的抗原沒有太特殊的要求。使用偶聯液溶解抗原，制備成終濃度為5-10 mg/ml的抗原溶液。

1.2.3抗原偶聯

1) 取適量的SulfoLink Coupling Resin，加入合適的重力柱中，靠重力流干保護液，用3倍柱體積的偶聯液平衡樹脂，待偶聯液流干，再加入3 倍柱體積的偶聯液，重復操作2遍。共使用9 倍柱體積的偶聯液。

2) 關閉柱子的下端出口，加入等體積的含氨基的抗原，混勻，取出轉移至合適的離心管中，置于28℃震蕩孵育3-5 小時，或者2-8℃震蕩孵育過夜（12-15 小時）。

注：確保樹脂充分懸浮起來，否則將大大影響偶聯效率。

3) 將上述反應體系取出，轉移至重力柱中，其中的抗原溶液，并收集流出，再用3 倍柱體積的偶聯液清洗樹脂，合并兩次流出，留待測試。

4) 關閉柱子的下端出口，加入等體積的封閉液，混勻，取出轉移至合適的離心管中，置于28℃震蕩孵育30min。

5) 將上述反應體系取出，轉移至重力柱中，流干其中的封閉液。

注：如果立即使用，可以參考1.2.4 操作。如果以后使用，可以用3 倍柱體積的結合液清洗樹脂，然后保存在等體積的保護液中，于2℃-8℃保存。

1.2.4抗體純化

1) 將偶聯了抗原的樹脂裝入合適的層析柱，用5 倍柱體積的結合液進行平衡，使填料處于與抗體更易結合環境中，一方面保護目標抗體，另一方面提高抗體結合效率。

2) 將含有抗體的樣品加到平衡好樹脂中，為了保證抗體與樹脂充分接觸，提高目標抗體的回收率，可以控制上樣流速在0.5-1 ml/min，并收集流出液。

3) 用10-15 倍柱體積的洗雜液進行清洗，去除非特異性吸附的雜蛋白，提高目的抗體的純度，收集洗雜液。

4) 使用5-10 倍柱體積的洗脫液，收集洗脫組分，即目的抗體。

注：為了保持抗體活性，需要立即將洗脫組分透析至pH 7.0-8.0 的緩沖液中，或者先加入1/10倍洗脫組分體積的中和液，將洗脫組分進行中和，再透析。

5) 依次使用3 倍柱體積的結合液和5 倍柱體積的去離子水平衡樹脂，最后再用5 倍柱體積的保護液平衡，然后保存在等體積的保護液中，置于2℃-8℃保存，防止填料被細菌污染。

1.3 SDS-PAGE檢測

將純化抗體樣品得到的流出組分、洗雜組分和洗脫組分以及原始含抗體樣品使用SDS-PAGE檢測純化效果。

問題及解決方案

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標題:PTX promotes breast cancer migration and invasion by recruiting ATF4 to upregulate FGF19

成員:Ting Xue, Xuezhen Wang, Xianjun Pan, Mei Liu, Faliang Xu

論文因子:4.4 發表期刊:CELLULAR SIGNALLING pmid:39053672

注意：以上文獻 僅供參考

SulfoLinkCouplingResin

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